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細胞培養(yǎng)實驗應該注意些什么?

閱讀:31      發(fā)布時間:2025-10-31
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細胞培養(yǎng)看似"把細胞放進培養(yǎng)箱就行",實則步步有陷阱。以下從環(huán)境、試劑、操作到監(jiān)測,梳理出最容易被忽視卻又最常導致實驗失敗的細節(jié),幫助新手和老手都能一次做出狀態(tài)"在線"的細胞。

一、環(huán)境篇:先給細胞一個"五星級"的家

1.       培養(yǎng)箱溫度、CO?、濕度三件套

·         36.5-37.0 :每日用獨立溫度計校準,避免箱顯"虛高"。

·         CO? 5%:與NaHCO?緩沖體系匹配;換瓶后必須重新平衡2 h再開門。

·         濕度≥90%:托盤加RO水至2/3,每周更換,防止霉菌蒸發(fā)。

2.       生物安全柜"預熱"
開機后等待5 min氣流穩(wěn)定再開始操作;實驗中途勿伸手出窗外,避免氣流斷層。

二、試劑篇:好血清是"半壁江山"

1.       胎牛血清分批購買先小試再大批,記錄批號;避免中途換批造成生長波動。

2.       解凍技巧
4
過夜→25 水浴10 min→立即混勻,杜絕37 長時間水浴導致活性下降。

3.       完quan培養(yǎng)基配制
先加血清再加雙抗,減少高濃度抗生素對血清蛋白的瞬時沖擊;4 避光保存≤2周。

4.       胰酶"分裝一次一用"
-20
保存,室溫融化后當天用完,避免反復凍融使消化力不均。

三、耗材篇:無菌不是"表面無菌"

1.       移液槍管"--"三刻線:拆包裝只捏尾部,槍頭不入盒內(nèi),降低手觸污染。

2.       培養(yǎng)瓶先外后內(nèi):75%酒精噴灑瓶身外壁,再開蓋吸液,防止灰塵落入。

3.       0.22 μm濾膜并不萬能
支原體、某些病毒可穿透;關(guān)鍵試劑(血清、胰酶)建議0.1 μm二次過濾或購買預過濾產(chǎn)品。

四、操作篇:慢工出細活

1.       "--"消化法
加入胰酶后迅速潤濕表面靜置15-20 s→立即加含血清培養(yǎng)基終止,防止過度消化導致膜蛋白損傷。

2.       吹打技巧
彎頭吸管貼壁輕柔推液,形成單細胞懸液;避免劇烈抽吸產(chǎn)生氣泡,氣泡=剪切力=細胞暗傷。

3.       傳代比例
貼壁細胞密度不低于20%,不高于90%;懸浮細胞保持0.5-1×10? cells/mL,過稀過密均會延長倍增時間。

4.       凍存"慢凍速融"
程序降溫盒-80 過夜液氮;復蘇37 水浴90 s內(nèi)完成,減少冰晶二次損傷。

五、監(jiān)測篇:把問題"可視化"

1.       每日臺賬:記錄傳代批次、消化時間、活率、形態(tài)描述,方便回溯異常。

2.       活率檢測:臺盼藍計數(shù)+實時阻抗儀雙驗證,避免單法偏差。

3.       形態(tài)拍照:同一位置、同一放大倍數(shù),建立"形態(tài)日歷",支原體污染早期即可發(fā)現(xiàn)邊緣毛糙、點狀熒光。

4.       定期"盲檢":每批次培養(yǎng)基隨機取樣做支原體PCR,陰性再啟用,防患于未然。

六、常見異??焖僭\斷表

 

現(xiàn)象

可能原因

即時對策

24 h不貼壁

胰酶過量、血清質(zhì)量差

降低消化時間/換批血清

培養(yǎng)液渾濁

細菌污染

丟棄,全面消毒,檢查水盤

細胞碎片多

溫度波動、CO?不足

校正培養(yǎng)箱,換新鮮培養(yǎng)基

倍增時間>30 h

密度過低/支原體

提高接種密度,PCR檢測

七、安全與倫理

·         人源/靈長類細胞按二類生物安全級別操作,廢液84消毒后傾倒。

·         動物血清采購自正規(guī)牧場,索取檢疫合格證明,符合動物福利法規(guī)。

結(jié)語
細胞培養(yǎng)是"細節(jié)控"的工作:溫度偏差1 、血清批次不同、槍頭觸碰瓶口,都可能讓一周的努力付諸東流。把上述清單變成習慣,您會發(fā)現(xiàn)細胞狀態(tài)穩(wěn)定、實驗可重復性顯著提高——這才是高效科研的真正捷徑。祝您的細胞永遠健康,實驗順利!


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